病毒学研究
病毒研究用Vutara单分子定位显微镜
的Vutara单分子定位系统是了解病毒粒子的重要工具。病毒颗粒通常比光的衍射极限(<200 nm)小得多，这使得单分子定位显微镜成为解决病毒颗粒结构细节或用细胞机制确定病毒成分定位的最合适的荧光技术。下面我们将重点介绍Vutara用于病毒研究的主要特性。
- 使用专利的双平面单分子定位的超分辨率图像，实现至少20 nm的XY和50 nm的Z精度。
- 唯一能够成像多种样品类型的3D单分子系统，从纯化的病毒粒子到组织切片和整个模型生物。
- 高速采集:理想的实时成像，粒子跟踪和快速数据采集。
- 综合应用流体学:蛋白质组、基因组或活细胞应用的多路成像。bob平台靠谱吗
- 强大的采集软件与实时单分子定位。
- 功能强大的可视化和分析软件包提供了完整的统计工具集。
Vutara病毒应用程序bob平台靠谱吗
下面我们着重介绍在Vutara上进行的病毒研究。Vutara具有在组织切片的覆盖层和深部对病毒样本进行单分子定位的独特能力，这使得Vutara成为唯一能够在同一显微镜上成像病毒粒子结构、病毒粒子与宿主细胞相互作用以及病毒感染对细胞生物学的影响的系统。在页面底部，您可以找到一些突出显示的病毒研究论文使用Vutara超分辨率显微镜执行。
Vutara病毒研究:
- 病毒粒子结构
- 病毒主机交互
- 病毒的病理
病毒粒子结构
阿隆纳斯，E.，利弗兰德，a.w.，古德赫蒂，M.，凡诺弗，D.，荣格，J.，祖拉，C.，基尔希曼，J.，菲奥雷，V.F.，道格拉斯，A.，巴克，t.h.，易，H.，赖特，e.r.，克罗，J.E，圣安杰洛，p.j.， 2014。将单个RNA敏感探针与亚衍射受限和活细胞成像相结合，可以对细胞中的病毒动态进行表征．ACS Nano 8, 302-315。doi.org/10.1021/nn405998v
作者开发了工具来研究包膜病毒的早期传染性和复制。
- 作者开发了MTRIPs(多重标记四价RNA成像探针)。hRSV病毒基因组活标记方法。
- MTRIP技术能够同时对蛋白质和病毒基因组进行超分辨率成像;这在传统的荧光原位杂交技术(FISH)中是不可能的。
- 作者使用Vutara来确定病毒蛋白质沿病毒gRNA的分布。只有单分子定位显微镜才能对这些低于300纳米的粒子成像。
宿主细胞相互作用
蒂瓦里，下午，凡诺弗，D.，林赛，k.e.，巴瓦奇，s.s.，基尔希曼，j.l.，博舍尔，S.，利弗兰德，a.w.，祖拉，C.，圣安杰洛，p.j.， 2018年。工程mrna表达抗体可预防呼吸道合胞病毒感染．自然通讯9,1-15。doi.org/10.1038/s41467 - 018 - 06508 - 3
作者使用Vutara显微镜来确定治疗性抗体palivizumab对RSV感染的作用机制。
- 利用Vutara对培养的细胞进行3D成像的能力，作者能够可视化细胞膜上的病毒颗粒。
- 当细胞表面表达palivizumab时，可以在细胞膜外观察到相邻的病毒粒子(病毒粒子大小约为100-300 nm)。
- 这提示palivizumab的作用机制是通过阻止RSV的融合和胞质吸收来预防感染。
病毒感染对宿主细胞的影响
E. Milrot, Shimoni, E. Dadosh, T.， Rechav, K.， Unger, T.， Etten, j.l.v.，明斯基，A.， 2017。结构研究证明了真核感染草履虫法氏小球藻病毒-1的噬菌体样复制周期．《公共科学图书馆·病原学》13,e1006562。doi.org/10.1371/journal.ppat.1006562
作者使用Vutara来确定病毒感染对细胞骨架结构的影响。由此，他们确定肌动蛋白细胞骨架在病毒传染性中起着关键作用。
- 作者使用超分辨率成像来监测微管和肌动蛋白细胞骨架在病毒感染过程中的变化。
- 在感染期间，微管网络变得更加破碎，并从细胞中心消失。
- 在感染过程中，肌动蛋白细胞骨架失去了细胞外围的精细结构，并在细胞的圆形边缘周围形成一个外壳。
- 药理学实验和其他实验表明，微管网络的破坏对病毒粒子的产生影响不大，而肌动蛋白细胞骨架的破坏则减少了病毒粒子的产生。
活细胞成像
病毒研究人员可能还对Vutara的活细胞和单分子粒子跟踪能力感兴趣。Vutara完全能够对细胞结构(如细胞器)进行活细胞单分子成像和单分子粒子跟踪。独特的是，Vutara还能够结合这两种技术进行粒子跟踪，并结合细胞结构成像。
请参阅活细胞网页及Vutara活细胞网络研讨会了解更多关于Vutara显微镜活细胞成像的知识SRX软件．
重点病毒研究出版物:
- 秋山，拉米雷斯，n.g.p.，古海蒂，m.v.， Gummuluru, S.， 2015。cd169介导的HIV运输到树突状细胞的质膜内陷削弱了抗gp120广泛中和抗体的效力．PLoS Pathog 11。https://doi.org/10.1371/journal.ppat.1004751
- 阿隆纳斯，E.，利弗兰德，a.w.，古德赫蒂，M.，凡诺弗，D.，荣格，J.，祖拉，C.，基尔希曼，J.，菲奥雷，V.F.，道格拉斯，A.，巴克，t.h.，易，H.，赖特，e.r.，克罗，J.E，圣安杰洛，p.j.， 2014。将单个RNA敏感探针与亚衍射受限和活细胞成像相结合，可以对细胞中的病毒动态进行表征．ACS Nano 8, 302-315。https://doi.org/10.1021/nn405998v
- 霍奇斯，J.，唐，X.，兰德斯曼，m.b.，鲁达斯，j.b.，吉米尔，A.，古德赫蒂，m.v.，佩诺特，J.，乔根森，e.m.，格顿，J. m .，萨弗里安，S.， 2013。水泡性口炎病毒内聚合酶的不对称包装．生物化学与生物物理研究通讯440,271-276。https://doi.org/10.1016/j.bbrc.2013.09.064
- Kiss, G.， Holl, j.m.， Williams, g.m.， Alonas, E.， Vanover, D.， Lifland, a.w.， Gudheti, M.， guerrro - ferreira, r.c.， Nair, V.， Yi, H.， Graham, b.s.， Santangelo, p.j.， Wright，急诊室，2014。呼吸道合胞病毒的结构分析揭示了M2-1在基质蛋白和核糖核蛋白复合体之间的位置．病毒学杂志88,7602-7617。https://doi.org/10.1128/JVI.00256-14
- E. Milrot, Shimoni, E. Dadosh, T.， Rechav, K.， Unger, T.， Etten, j.l.v.，明斯基，A.， 2017。结构研究证明了真核感染草履虫法氏小球藻病毒-1的噬菌体样复制周期．《公共科学图书馆·病原学》13,e1006562。https://doi.org/10.1371/journal.ppat.1006562
- 蒂瓦里，下午，凡诺弗，D.，林赛，k.e.，巴瓦奇，s.s.，基尔希曼，j.l.，博舍尔，S.，利弗兰德，a.w.，祖拉，C.，圣安杰洛，p.j.， 2018年。工程mrna表达抗体可预防呼吸道合胞病毒感染．自然通讯9,1-15。https://doi.org/10.1038/s41467-018-06508-3
- Yaakov, l.b.， Mutsafi, Y.， Porat, Z.， Dadosh, T.， Minsky, A.， 2019。用图像流式细胞术定量Mimivirus感染阶段的动力学．细胞仪A 95,534 - 548。https://doi.org/10.1002/cyto.a.23770
